Hipotensão intraoperatória em cães e gatos: causas e conduta

A PAM caiu para 52. O reflexo é abrir o soro. Mas e se o paciente estiver profundo demais, bradicárdico, ou se o monitor estiver lendo errado? A hipotensão é a complicação mais comum da anestesia em cães e gatos — e a resposta automática nem sempre é a certa. Este texto percorre o que conta como hipotensão, com que frequência ela aparece, por que acontece, quando a medida engana e a conduta por etapas, com a evidência de cada uma.

O que conta como hipotensão

As diretrizes de anestesia e monitoração da AAHA de 2020 definem hipotensão como pressão arterial sistólica abaixo de 80–90 mmHg, média abaixo de 60–70 mmHg ou diastólica abaixo de 40 mmHg. As diretrizes de anestesia felina da AAFP (2018) sugerem, para gatos, sistólica abaixo de 90 mmHg e média abaixo de 60 mmHg, e lembram que a hipotensão é comum mesmo em gatos saudáveis em procedimentos curtos. Na prática dos especialistas, o número é parecido: numa pesquisa com 151 diplomados dos colégios americano e europeu de anestesiologia veterinária, a definição média foi PAM abaixo de 62 ± 4 mmHg ou sistólica abaixo de 87 ± 8 mmHg, e o tratamento começava por volta de PAM 61 ou sistólica 85 mmHg.

O motivo dos limites em torno de 60 mmHg de PAM é clássico: abaixo disso, a capacidade de órgãos como rim e cérebro manterem o próprio fluxo (autorregulação) fica comprometida — o que segue o ensino de fisiologia mais que um estudo veterinário específico. As diretrizes de monitoração da ACVAA de 2025 substituíram as de 2009 e ampliaram a seção de monitoração da circulação.

Isso faz diferença no desfecho?

A evidência veterinária é observacional, mas aponta na mesma direção. Em 50 cães de clínica, 76% tiveram PAM abaixo de 60 mmHg, e a elevação de um marcador urinário de lesão tubular (GGT urinária/creatinina) após a anestesia, vista em 82% dos cães, foi explicada em 62% pela PAM mais baixa somada ao tempo abaixo de 50 mmHg. Em galgos mantidos experimentalmente com PAM abaixo de 40 mmHg por 60 minutos, houve dano tubular à histologia e elevação precoce de biomarcadores — com a creatinina ainda normal. Em cirurgias de risco, como colecistectomia por mucocele e cirurgia abdominal de emergência, a hipotensão intraoperatória se associou a maior mortalidade.

Em humanos, os dados são mais robustos. Em 33.330 cirurgias não cardíacas, o risco de lesão renal aguda e de lesão miocárdica aumentou com PAM abaixo de 55 mmHg, e cresceu com o tempo de exposição; outro estudo grande mostrou o mesmo com PAM abaixo de 65 mmHg. Uma revisão recente nota que ensaios com mais de 13 mil pacientes não mostraram vantagem em mirar pressões mais altas que cerca de 65 mmHg. A tradução para cães e gatos é limitada, mas o recado é razoável: profundidade e duração da hipotensão importam.

Com que frequência acontece e quem está em risco

Estudo	População	Hipotensão
Redondo et al., 2007	1.281 anestesias em cães (retrospectivo)	37,9%
Gaynor et al., 1999	2.556 cães e 683 gatos, hospital-escola	7% dos cães e 8,5% dos gatos
Brown e Murison, 2024	1.019 gatos saudáveis em castração	22,6% (a complicação mais comum)
Iizuka et al., 2013	Cães, PAM < 60 por mais de 5 min	65,3% com isoflurano-fentanil × 27,6% com propofol-fentanil
Costa et al., 2015	Cães jovens em castração eletiva, pressão invasiva	49% e 71% em duas coortes
Mignini et al., 2026	390 cães, PAM ≤ 60 em 3 leituras seguidas	18,5%

A variação enorme reflete definição, método de medida e população — com pressão invasiva e definição rígida, a hipotensão aparece em metade dos cães jovens saudáveis. Os fatores de risco que se repetem:

• Acepromazina: em 341 cadelas em ovário-histerectomia, a chance de hipotensão foi 2,61 vezes maior com acepromazina que com dexmedetomidina na pré-medicação, com hipotensão mais precoce, mais longa e mais uso de dopamina. Em gatos, a acepromazina também foi fator de risco, e a AAFP alerta que ela pode tornar a hipotensão mais difícil de tratar.
• Dose de inalatório e tempo de anestesia: isoflurano máximo mais alto e anestesia mais longa em gatos; anestesia com isoflurano mais hipotensora que a intravenosa com propofol em cães.
• Baixo peso e pouca idade: cães e gatos menores e cães com menos de 12 meses tiveram mais hipotensão; em cães jovens, densidade urinária mais baixa se associou a PAM mais baixa, sugerindo desidratação subclínica.
• Cirurgia abdominal (OR 5,56 no estudo de 390 cães) e epidural com anestésico local, cuja hipotensão variou com o volume usado.

Por que a pressão cai: os quatro mecanismos

A pressão arterial é o produto do débito cardíaco pela resistência vascular sistêmica, e o débito é o produto da frequência cardíaca pelo volume sistólico. Uma revisão recente em anestesia humana organiza a hipotensão intraoperatória em quatro "endotipos" — e essa divisão serve muito bem para cães e gatos, porque cada um pede uma resposta diferente:

Mecanismo	Causas típicas na anestesia	Resposta mais lógica
Vasodilatação	Inalatório em dose alta, acepromazina, propofol, epidural com anestésico local, sepse	Reduzir o inalatório; anestesia balanceada; vasoconstritor se persistir
Bradicardia	Opioides, α2-agonistas, reflexos vagais, hipotermia, hipercalemia	Anticolinérgico (exceto α2), interromper o estímulo vagal, reverter fármaco
Baixo volume (pré-carga)	Desidratação, hemorragia, jejum, ventilação com pressão positiva	Prova de fluido, de preferência guiada por índice dinâmico
Depressão do miocárdio	Inalatório em dose alta, cardiopatia, acidose, hipotermia	Reduzir o inalatório; inotrópico (dopamina, dobutamina)

O inalatório aparece em duas linhas, e não por acaso. Em cães, o sevoflurano reduziu de forma progressiva a resistência vascular e as pressões sistólica, média e diastólica entre 1 e 2 CAM, com queda discreta do volume sistólico — com efeitos semelhantes aos do isoflurano. É o motivo de quase toda conduta começar pelo vaporizador.

Antes de tratar: o número está certo?

O oscilométrico é o método mais usado, e é justamente na hipotensão que ele mais erra — geralmente para cima, o que faz a hipotensão passar despercebida.

• Em cães com hipotensão por hemorragia (PAM invasiva em torno de 40 mmHg), um monitor oscilométrico superestimou a PAM em 24 mmHg e a sistólica em 32 mmHg.
• Em 40 cães, a PAM oscilométrica acertou em média, mas com limites de concordância largos: usar o corte de 60 mmHg detectou só 40% das hipotensões reais; com 70 mmHg, a sensibilidade subiu para 68%.
• O Doppler em cães teve viés médio pequeno (2,8 mmHg), mas limites de −46 a +52 mmHg, e detectou a hipotensão em só 67–69% dos casos.
• Em gatos, o Doppler subestimou a sistólica (cerca de 9 a 14 mmHg em dois estudos) e não serve para estimar a PAM; três monitores oscilométricos veterinários tiveram limites de concordância de cerca de ±40 mmHg, enquanto um monitor específico teve PAM aceitável.

O que fazer com isso: manguito com largura de 30 a 40% da circunferência do membro, na altura da base do coração (o consenso da ACVIM corrige 0,8 mmHg por centímetro de diferença de altura); valorizar a tendência mais que a leitura isolada; repetir a medida que destoa; e, em gatos, lembrar que o Doppler dá a sistólica, não a média. Um estudo sugere que, com o oscilométrico, um alvo de PAM de 70 mmHg protege melhor que o de 60. Em pacientes instáveis ou de alto risco, a pressão invasiva é o padrão.

Conduta por etapas

A AAHA de 2020 e as diretrizes de fluidoterapia da AAHA de 2024 seguem a mesma ordem: ajustar a anestesia, corrigir a frequência, dar volume com critério e, se persistir, usar fármacos vasoativos.

1. Reduza o inalatório — e substitua por analgesia

As diretrizes de fluidoterapia de 2024 começam pelo vaporizador: pequenas reduções podem ter efeito importante na pressão. O experimento que melhor ilustra isso foi feito em cães saudáveis com isoflurano expirado de 3%: 1 mL/kg/min de cristaloide por 45 minutos não melhorou pressão, débito nem volume sistólico — só diluiu o sangue. A pressão voltou quando o isoflurano expirado caiu para 1,6%.

Para reduzir o inalatório sem superficializar o paciente, a AAHA recomenda técnicas balanceadas: mais opioide, bloqueio locorregional ou infusões. Em cães, a infusão de morfina, lidocaína e cetamina (MLK) reduziu a CAM do isoflurano em 45% sem efeitos hemodinâmicos adversos; com fentanil no lugar da morfina, a redução clínica chegou a 97%. Em gatos, há um porém: a lidocaína reduziu a necessidade de isoflurano, mas com mais depressão cardiovascular que uma dose equivalente do próprio isoflurano, e os autores não a recomendam para esse fim. A anestesia intravenosa com propofol e fentanil teve menos hipotensão que isoflurano e fentanil em cães (27,6% × 65,3%).

2. Olhe a frequência cardíaca

Se o paciente está hipotenso e bradicárdico, a AAHA recomenda anticolinérgico (atropina ou glicopirrolato) ou efedrina. A evidência apoia: em cães com fentanil, a redução de CAM só trouxe ganho cardiovascular quando a bradicardia foi prevenida com glicopirrolato (FC, PAM e índice cardíaco subiram); em cães com FC entre 65 e 85 bpm, glicopirrolato 0,01 mg/kg IV elevou as pressões sistólica, média e diastólica. Cães pequenos (até 10 kg) precisaram repetir a dose com mais frequência.

A exceção é a bradicardia do α2-agonista. Com dexmedetomidina, a atropina elevou a pressão, mas não melhorou o débito cardíaco e provocou arritmias; dada antes, piorou e prolongou a hipertensão. Os detalhes — incluindo a fase paradoxal da atropina — estão em Arritmias no ECG durante a anestesia.

3. Fluido: para quem responde a volume

As doses de referência são da AAHA 2020: bolus de cristaloide de 5 a 20 mL/kg, conforme a necessidade, e/ou coloide de 1 a 5 mL/kg; a AAFP sugere 5 a 15 mL/kg de cristaloide em gatos. As diretrizes de fluidoterapia de 2024 fazem duas ressalvas: nem toda hipotensão se corrige com fluido, e acima de 20 mL/kg numa mesma anestesia é preciso reavaliar. Em doença renal avançada (IRIS 3–4), não se deve tentar corrigir a hipotensão com taxas excessivas de fluido. A taxa de manutenção de partida é de 5 mL/kg/h em cães e 3–5 mL/kg/h em gatos.

Por que o fluido às vezes não funciona? Porque o mecanismo da hipotensão não era volume. Em cães saudáveis com hipotensão por isoflurano, até 80 mL/kg de Ringer lactato não elevaram a pressão sistólica em nenhum cão (o hidroxietilamido elevou em 4 de 6). Com acepromazina, 20 mL/kg de Ringer não aumentaram o débito e chegaram a piorar a hipotensão no início; a acepromazina atenuou o efeito de todos os tratamentos testados.

Na clínica, o cenário é outro: em cães hipotensos em cirurgia ortopédica, 76% aumentaram o débito em pelo menos 15% com 15 mL/kg de Ringer em 15 minutos; em outro estudo, 70% responderam a 5 mL/kg. E dá para prever quem responde: em cães sob ventilação mecânica, a variação de pressão de pulso (VPP) acima de cerca de 15% identificou os respondedores com especificidade de 96 a 100%, muito melhor que a pressão venosa central. Uma metanálise recente confirmou a boa acurácia da VPP (sensibilidade 0,88, especificidade 0,97) e, um pouco menor, do índice de variabilidade pletismográfica (PVI) — com a ressalva de alto risco de viés nos estudos. A VPP só vale com ventilação controlada e tórax fechado.

4. Se persistir: inotrópico ou vasopressor

A AAHA orienta inotrópico quando o problema é contratilidade e vasoconstritor quando é vasodilatação excessiva. As doses da tabela vêm da figura de suporte pressórico das diretrizes de 2020; a coluna de evidência resume os estudos em cães e gatos anestesiados.

Fármaco (AAHA 2020, IV)	Ação	O que os estudos mostram
Efedrina 0,1–0,2 mg/kg em bolus	Inotrópico e vasoconstritor indireto; taquifilaxia	Cães: aumentou débito e oferta de O₂, mas a PAM subiu por menos de 5 min; segundo bolus não acrescentou. Em cães, a FC caiu após efedrina IV, e a atropina prévia aumentou a chance de atingir PAM > 70; em gatos, não
Dopamina 1–15 µg/kg/min	Inotrópico (vasoconstritor em doses maiores)	Cães: sem efeito a 5 µg/kg/min; eficaz a 7–10 µg/kg/min (7 sugerido como dose-guia). Gatos: a mais útil entre quatro fármacos; elevou pressão e débito em gatos com cardiomiopatia hipertrófica
Dobutamina 1–10 µg/kg/min	Inotrópico	Cães: aumentou o débito com pouca mudança na pressão. Gatos: não elevou a PAM
Noradrenalina 0,05–0,3 µg/kg/min	Principalmente vasoconstritor	Cães: elevou PAM, débito e oferta de O₂ de forma dose-dependente; foi o único a atingir a meta em hipotensão grave por isoflurano (média de 0,44 µg/kg/min)
Fenilefrina 0,3–1 µg/kg/min ou 1–3 µg/kg em bolus	Vasoconstritor	Cães com acepromazina: elevou a PAM tanto quanto a noradrenalina, mas reduzindo o débito. Gatos: elevou a pressão sem aumentar o débito

Dois pontos práticos. A efedrina é ótima para "ganhar tempo" enquanto se ajusta o plano, mas não sustenta a pressão sozinha. E o vasoconstritor puro (fenilefrina) sobe o número às custas do débito — útil quando o problema é vasodilatação, ruim quando o coração já está deprimido. Na dúvida sobre o mecanismo, dopamina e noradrenalina têm a melhor relação entre pressão e débito nos estudos citados.

5. Se nada funcionar

A AAHA lista o que procurar quando a hipotensão persiste: hipoglicemia, hipotermia, anemia ou hipoproteinemia e distúrbios eletrolíticos. Vale acrescentar o que a própria cirurgia pode estar fazendo — hemorragia não vista, compressão da veia cava, tração de vísceras —, e conversar com o cirurgião. A AAFP, para gatos, sugere considerar encerrar a anestesia se não houver resposta.

Na rotina: um roteiro diante da PAM baixa

• Confirme o número: manguito do tamanho certo, membro na altura do coração, medida repetida, tendência. Pulso, mucosas e curva do oxímetro concordam?
• Olhe o vaporizador e o plano: o paciente está mais profundo do que precisa? Reduza e reforce a analgesia.
• Olhe a frequência: bradicárdico? Anticolinérgico — a menos que seja α2-agonista.
• Pense em volume: jejum, desidratação, sangramento, cirurgia abdominal. Se ventilado, a VPP ajuda a decidir. Prova de 5–15 mL/kg e reavaliação.
• Persistiu: efedrina para ganhar tempo; dopamina ou noradrenalina em infusão.
• Anote tudo: valor, hora, o que foi feito e a resposta. A pressão anotada a cada 5 minutos é o que permite saber quanto tempo o paciente ficou hipotenso — e o tempo, pelo que os estudos mostram, também importa.

Conclusão

A hipotensão é tão comum que corre o risco de ser tratada no automático — e o automático costuma ser o soro. A evidência mostra que a ordem importa: primeiro confirmar que o número é real, depois reduzir o inalatório e reforçar a analgesia, corrigir a bradicardia (com o cuidado do α2-agonista), dar volume a quem responde a volume e, só então, recorrer a vasoativos escolhidos pelo mecanismo. Profundidade e duração da hipotensão parecem pesar no rim e no desfecho — o que faz da monitoração contínua, e do registro dela, parte do tratamento.

Referências

• AARNES, T. K.; BEDNARSKI, R. M.; LERCHE, P.; HUBBELL, J. A.; MUIR, W. W. Effect of intravenous administration of lactated Ringer's solution or hetastarch for the treatment of isoflurane-induced hypotension in dogs. American Journal of Veterinary Research, v. 70, n. 11, p. 1345-1353, 2009. DOI: 10.2460/ajvr.70.11.1345.
• ACIERNO, M. J.; BROWN, S.; COLEMAN, A. E.; JEPSON, R. E.; PAPICH, M.; STEPIEN, R. L.; SYME, H. M. ACVIM consensus statement: Guidelines for the identification, evaluation, and management of systemic hypertension in dogs and cats. Journal of Veterinary Internal Medicine, v. 32, n. 6, p. 1803-1822, 2018. DOI: 10.1111/jvim.15331.
• ACIERNO, M. J.; SEATON, D.; MITCHELL, M. A.; DA CUNHA, A. Agreement between directly measured blood pressure and pressures obtained with three veterinary-specific oscillometric units in cats. JAVMA, v. 237, n. 4, p. 402-406, 2010. DOI: 10.2460/javma.237.4.402.
• AGUADO, D.; BENITO, J.; GÓMEZ DE SEGURA, I. A. Reduction of the minimum alveolar concentration of isoflurane in dogs using a constant rate of infusion of lidocaine-ketamine in combination with either morphine or fentanyl. The Veterinary Journal, v. 189, n. 1, p. 63-66, 2011. DOI: 10.1016/j.tvjl.2010.05.029.
• ALVAIDES, R. K.; TEIXEIRA NETO, F. J.; AGUIAR, A. J.; CAMPAGNOL, D.; STEAGALL, P. V. Sedative and cardiorespiratory effects of acepromazine or atropine given before dexmedetomidine in dogs. Veterinary Record, v. 162, n. 26, p. 852-856, 2008. DOI: 10.1136/vr.162.26.852.
• BAILEY, K.; BRILEY, J.; DUFFEE, L.; et al. The American College of Veterinary Anesthesia and Analgesia Small Animal Anesthesia and Sedation Monitoring Guidelines 2025. Veterinary Anaesthesia and Analgesia, v. 52, n. 4, p. 377-385, 2025. DOI: 10.1016/j.vaa.2025.03.015.
• BOURAZAK, L. A.; HOFMEISTER, E. H. Bias, sensitivity, and specificity of Doppler ultrasonic flow detector measurement of blood pressure for detecting and monitoring hypotension in anesthetized dogs. JAVMA, v. 253, n. 11, p. 1433-1438, 2018. DOI: 10.2460/javma.253.11.1433.
• BROWN, J. F.; MURISON, P. J. Perioperative anaesthetic complications in healthy cats undergoing anaesthesia for neutering in first opinion practice. Journal of Feline Medicine and Surgery, v. 26, n. 10, 2024. DOI: 10.1177/1098612X241285269.
• CANNAROZZO, C. J.; ARAOS, J.; MARTIN-FLORES, M. Phenylephrine and norepinephrine increase blood pressure through opposing physiologic mechanisms in isoflurane-anesthetized dogs receiving acepromazine. American Journal of Veterinary Research, v. 84, n. 11, 2023. DOI: 10.2460/ajvr.23.06.0147.
• CEREJO, S. A.; et al. Comparison of two species-specific oscillometric blood pressure monitors with direct blood pressure measurement in anesthetized cats. Journal of Veterinary Emergency and Critical Care, v. 27, n. 4, p. 409-418, 2017. DOI: 10.1111/vec.12623.
• CEREJO, S. A.; TEIXEIRA-NETO, F. J.; GAROFALO, N. A.; PIMENTA, E. L.; ZANUZZO, F. S.; KLEIN, A. V. Effects of cuff size and position on the agreement between arterial blood pressure measured by Doppler ultrasound and through a dorsal pedal artery catheter in anesthetized cats. Veterinary Anaesthesia and Analgesia, v. 47, n. 2, p. 191-199, 2020. DOI: 10.1016/j.vaa.2019.11.001.
• CHEN, B. W.; DAVIS, J.; ROSSI, G.; HOSGOOD, G. L.; RAISIS, A. L. Exploring urinary biomarkers of early acute kidney injury in a clinical model of canine intraoperative hypotension. Veterinary Anaesthesia and Analgesia, v. 52, n. 3, p. 311-319, 2025. DOI: 10.1016/j.vaa.2025.02.005.
• CHEN, H. C.; SINCLAIR, M. D.; DYSON, D. H. Use of ephedrine and dopamine in dogs for the management of hypotension in routine clinical cases under isoflurane anesthesia. Veterinary Anaesthesia and Analgesia, v. 34, n. 5, p. 301-311, 2007. DOI: 10.1111/j.1467-2995.2006.00327.x.
• CONGDON, J. M.; MARQUEZ, M.; NIYOM, S.; BOSCAN, P. Evaluation of the sedative and cardiovascular effects of intramuscular administration of dexmedetomidine with and without concurrent atropine administration in dogs. JAVMA, v. 239, n. 1, p. 81-89, 2011. DOI: 10.2460/javma.239.1.81.
• COSTA, R. S.; RAISIS, A. L.; HOSGOOD, G.; MUSK, G. C. Preoperative factors associated with hypotension in young anaesthetised dogs undergoing elective desexing. Australian Veterinary Journal, v. 93, n. 4, p. 99-104, 2015. DOI: 10.1111/avj.12306.
• DA CUNHA, A. F.; SAILE, K.; BEAUFRÈRE, H.; WOLFSON, W.; SEATON, D.; ACIERNO, M. J. Measuring level of agreement between values obtained by directly measured blood pressure and ultrasonic Doppler flow detector in cats. Journal of Veterinary Emergency and Critical Care, v. 24, n. 3, p. 272-278, 2014. DOI: 10.1111/vec.12161.
• DAVIS, J.; ROSSI, G.; CIANCIOLO, R. E.; HO, K. M.; HOSGOOD, G. L.; MILLER, D. W.; RAISIS, A. L. Early diagnosis of acute kidney injury subsequent to severe hypotension and fluid resuscitation in anaesthetized dogs. Veterinary Anaesthesia and Analgesia, v. 49, n. 4, p. 344-353, 2022. DOI: 10.1016/j.vaa.2022.02.006.
• DONATI, P. A.; TARRAGONA, L.; CORDERO, I. S.; et al. Diagnostic accuracy of pulse pressure variation, stroke volume variation and pleth variability index for prediction of fluid responsiveness in anesthetized and mechanically ventilated dogs: a systematic review and meta-analysis. Veterinary Anaesthesia and Analgesia, v. 53, n. 1, art. 101150, 2026. DOI: 10.1016/j.vaa.2025.10.006.
• DYSON, D. H.; JAMES-DAVIES, R. Dose effect and benefits of glycopyrrolate in the treatment of bradycardia in anesthetized dogs. Canadian Veterinary Journal, v. 40, n. 5, p. 327-331, 1999.
• DYSON, D. H.; SINCLAIR, M. D. Impact of dopamine or dobutamine infusions on cardiovascular variables after rapid blood loss and volume replacement during isoflurane-induced anesthesia in dogs. American Journal of Veterinary Research, v. 67, n. 7, p. 1121-1130, 2006. DOI: 10.2460/ajvr.67.7.1121.
• FAGES, A.; SOLER, C.; FERNÁNDEZ-SALESA, N.; CONTE, G.; DEGANI, M.; BRIGANTI, A. Perioperative outcome in dogs undergoing emergency abdominal surgery: a retrospective study on 82 cases (2018-2020). Veterinary Sciences, v. 8, n. 10, art. 209, 2021. DOI: 10.3390/vetsci8100209.
• FANTONI, D. T.; IDA, K. K.; GIMENES, A. M.; et al. Pulse pressure variation as a guide for volume expansion in dogs undergoing orthopedic surgery. Veterinary Anaesthesia and Analgesia, v. 44, n. 4, p. 710-718, 2017. DOI: 10.1016/j.vaa.2016.11.011.
• GAYNOR, J. S.; DUNLOP, C. I.; WAGNER, A. E.; WERTZ, E. M.; GOLDEN, A. E.; DEMME, W. C. Complications and mortality associated with anesthesia in dogs and cats. Journal of the American Animal Hospital Association, v. 35, n. 1, p. 13-17, 1999. DOI: 10.5326/15473317-35-1-13.
• GONÇALVES, L. A.; OTSUKI, D. A.; PEREIRA, M. A.; NAGASHIMA, J. K.; AMBROSIO, A. M.; FANTONI, D. T. Comparison of pulse pressure variation versus echocardiography-derived stroke volume variation for prediction of fluid responsiveness in mechanically ventilated anesthetized dogs. Veterinary Anaesthesia and Analgesia, v. 47, n. 1, p. 28-37, 2020. DOI: 10.1016/j.vaa.2019.08.047.
• GRANDY, J. L.; DUNLOP, C. I.; HODGSON, D. S.; CURTIS, C. R.; CHAPMAN, P. L. Evaluation of the Doppler ultrasonic method of measuring systolic arterial blood pressure in cats. American Journal of Veterinary Research, v. 53, n. 7, p. 1166-1169, 1992. DOI: 10.2460/ajvr.1992.53.7.1166.
• GRUBB, T.; SAGER, J.; GAYNOR, J. S.; MONTGOMERY, E.; PARKER, J. A.; SHAFFORD, H.; TEARNEY, C. 2020 AAHA Anesthesia and Monitoring Guidelines for Dogs and Cats. Journal of the American Animal Hospital Association, v. 56, n. 2, p. 59-82, 2020. DOI: 10.5326/JAAHA-MS-7055.
• HENAO-GUERRERO, N.; RICCO-PEREIRA, C. H.; PARANJAPE, V. V. A comparison of dobutamine, norepinephrine, vasopressin, and hetastarch for the treatment of isoflurane-induced hypotension in healthy, normovolemic dogs. Animals, v. 13, n. 16, art. 2674, 2023. DOI: 10.3390/ani13162674.
• IIZUKA, T.; KAMATA, M.; YANAGAWA, M.; NISHIMURA, R. Incidence of intraoperative hypotension during isoflurane-fentanyl and propofol-fentanyl anaesthesia in dogs. The Veterinary Journal, v. 198, n. 1, p. 289-291, 2013. DOI: 10.1016/j.tvjl.2013.06.021.
• JOOSTEN, A.; et al. Intraoperative blood pressure management in noncardiac surgery: a narrative review. Intensive Care Medicine, v. 52, n. 3, p. 500-511, 2026. DOI: 10.1007/s00134-026-08326-4.
• KOJIMA, K.; ISHIZUKA, T.; SASAKI, N.; NAKAMURA, K.; TAKIGUCHI, M. Cardiovascular effects of dose escalating of norepinephrine in healthy dogs anesthetized with isoflurane. Veterinary Anaesthesia and Analgesia, v. 48, n. 5, p. 654-662, 2021. DOI: 10.1016/j.vaa.2021.06.010.
• MACHADO, M. L.; SOARES, J. H. N.; PYPENDOP, B. H.; HENAO-GUERRERO, N.; OLIVEIRA, R. L. S. Effect of fentanyl, with or without treatment of bradycardia, on the minimum alveolar concentration of isoflurane and cardiovascular function in dogs. Veterinary Anaesthesia and Analgesia, v. 49, n. 1, p. 26-35, 2022. DOI: 10.1016/j.vaa.2021.09.001.
• MARTIN-FLORES, M.; MOSTOWY, M. M.; PITTMAN, E.; SAKAI, D. M.; MOHAMMED, H. O.; GLEED, R. D.; CAMPOY, L. Investigation of associations between preoperative acepromazine or dexmedetomidine administration and development of arterial hypotension or bradycardia in dogs undergoing ovariohysterectomy. JAVMA, v. 255, n. 2, p. 193-199, 2019. DOI: 10.2460/javma.255.2.193.
• MIGNINI, B.; RIVES, A.; DEGANI, M.; TALARICO, C.; FARNIR, F.; SANDERSEN, C. Risk factors for hypotension in anaesthetized dogs: a retrospective analysis of 390 cases. Frontiers in Veterinary Science, v. 13, art. 1846419, 2026. DOI: 10.3389/fvets.2026.1846419.
• MUIR, W. W.; WIESE, A. J.; MARCH, P. A. Effects of morphine, lidocaine, ketamine, and morphine-lidocaine-ketamine drug combination on minimum alveolar concentration in dogs anesthetized with isoflurane. American Journal of Veterinary Research, v. 64, n. 9, p. 1155-1160, 2003. DOI: 10.2460/ajvr.2003.64.1155.
• MUTOH, T.; NISHIMURA, R.; KIM, H. Y.; MATSUNAGA, S.; SASAKI, N. Cardiopulmonary effects of sevoflurane, compared with halothane, enflurane, and isoflurane, in dogs. American Journal of Veterinary Research, v. 58, n. 8, p. 885-890, 1997. DOI: 10.2460/ajvr.1997.58.08.885.
• PARDO, M.; SPENCER, E.; ODUNAYO, A.; RAMIREZ, M. L.; RUDLOFF, E.; SHAFFORD, H.; WEIL, A.; WOLFF, E. 2024 AAHA Fluid Therapy Guidelines for Dogs and Cats. Journal of the American Animal Hospital Association, v. 60, n. 4, p. 131-163, 2024. DOI: 10.5326/JAAHA-MS-7444.
• PARREÑO, C. M.; GILES, D.; CORLETTO, F. Machine learning analysis of factors contributing to hypotension after lumbosacral epidural anaesthesia in dogs undergoing abdominal surgery. Scientific Reports, v. 15, n. 1, art. 18009, 2025. DOI: 10.1038/s41598-025-01991-3.
• PASCOE, P. J.; ILKIW, J. E.; PYPENDOP, B. H. Effects of increasing infusion rates of dopamine, dobutamine, epinephrine, and phenylephrine in healthy anesthetized cats. American Journal of Veterinary Research, v. 67, n. 9, p. 1491-1499, 2006. DOI: 10.2460/ajvr.67.9.1491.
• PYPENDOP, B. H.; ILKIW, J. E. Assessment of the hemodynamic effects of lidocaine administered IV in isoflurane-anesthetized cats. American Journal of Veterinary Research, v. 66, n. 4, p. 661-668, 2005. DOI: 10.2460/ajvr.2005.66.661.
• REDONDO, J. I.; RUBIO, M.; SOLER, G.; SERRA, I.; SOLER, C.; GÓMEZ-VILLAMANDOS, R. J. Normal values and incidence of cardiorespiratory complications in dogs during general anaesthesia. A review of 1281 cases. Journal of Veterinary Medicine Series A, v. 54, n. 9, p. 470-477, 2007. DOI: 10.1111/j.1439-0442.2007.00987.x.
• ROBERTSON, S. A.; GOGOLSKI, S. M.; PASCOE, P.; SHAFFORD, H. L.; SAGER, J.; GRIFFENHAGEN, G. M. AAFP Feline Anesthesia Guidelines. Journal of Feline Medicine and Surgery, v. 20, n. 7, p. 602-634, 2018. DOI: 10.1177/1098612X18781391.
• ROSATI, M.; DYSON, D. H.; SINCLAIR, M. D.; SEARS, W. C. Response of hypotensive dogs to dopamine hydrochloride and dobutamine hydrochloride during deep isoflurane anesthesia. American Journal of Veterinary Research, v. 68, n. 5, p. 483-494, 2007. DOI: 10.2460/ajvr.68.5.483.
• RUFFATO, M.; NOVELLO, L.; CLARK, L. What is the definition of intraoperative hypotension in dogs? Results from a survey of diplomates of the ACVAA and ECVAA. Veterinary Anaesthesia and Analgesia, v. 42, n. 1, p. 55-64, 2015. DOI: 10.1111/vaa.12169.
• SALMASI, V.; MAHESHWARI, K.; YANG, D.; MASCHA, E. J.; SINGH, A.; SESSLER, D. I.; KURZ, A. Relationship between intraoperative hypotension, defined by either reduction from baseline or absolute thresholds, and acute kidney and myocardial injury after noncardiac surgery. Anesthesiology, v. 126, n. 1, p. 47-65, 2017. DOI: 10.1097/ALN.0000000000001432.
• SANO, H.; SEO, J.; WIGHTMAN, P.; et al. Evaluation of pulse pressure variation and pleth variability index to predict fluid responsiveness in mechanically ventilated isoflurane-anesthetized dogs. Journal of Veterinary Emergency and Critical Care, v. 28, n. 4, p. 301-309, 2018. DOI: 10.1111/vec.12728.
• SEDGWICK, S.; LORENZUTTI, A. M.; ARAOS, J. B.; GLEED, R. D.; MARTIN-FLORES, M. Evaluation of an oscillometric blood pressure monitor in anesthetized dogs. Research in Veterinary Science, v. 135, p. 162-166, 2021. DOI: 10.1016/j.rvsc.2021.01.016.
• SEKI, D.; GOYA, S.; TESHIMA, K.; YAMAYA, Y. Emergency administration of ephedrine for general anesthesia-induced hypotension requires preemptive atropine in dogs but not cats. JAVMA, v. 263, n. 11, p. 1399-1405, 2025. DOI: 10.2460/javma.25.01.0038.
• SHIH, A.; ROBERTSON, S.; VIGANI, A.; DA CUNHA, A.; PABLO, L.; BANDT, C. Evaluation of an indirect oscillometric blood pressure monitor in normotensive and hypotensive anesthetized dogs. Journal of Veterinary Emergency and Critical Care, v. 20, n. 3, p. 313-318, 2010. DOI: 10.1111/j.1476-4431.2010.00536.x.
• SINCLAIR, M. D.; DYSON, D. H. The impact of acepromazine on the efficacy of crystalloid, dextran or ephedrine treatment in hypotensive dogs under isoflurane anesthesia. Veterinary Anaesthesia and Analgesia, v. 39, n. 6, p. 563-573, 2012. DOI: 10.1111/j.1467-2995.2012.00766.x.
• ULLAL, T. V.; et al. Increasing age and severe intraoperative hypotension associated with nonsurvival in dogs with gallbladder mucocele undergoing cholecystectomy. JAVMA, v. 261, n. 12, 2023. DOI: 10.2460/javma.23.06.0305.
• VALVERDE, A.; GIANOTTI, G.; RIOJA-GARCIA, E.; HATHWAY, A. Effects of high-volume, rapid-fluid therapy on cardiovascular function and hematological values during isoflurane-induced hypotension in healthy dogs. Canadian Journal of Veterinary Research, v. 76, n. 2, p. 99-108, 2012.
• WALSH, M.; DEVEREAUX, P. J.; GARG, A. X.; KURZ, A.; TURAN, A.; RODSETH, R. N.; CYWINSKI, J.; THABANE, L.; SESSLER, D. I. Relationship between intraoperative mean arterial pressure and clinical outcomes after noncardiac surgery: toward an empirical definition of hypotension. Anesthesiology, v. 119, n. 3, p. 507-515, 2013. DOI: 10.1097/ALN.0b013e3182a10e26.
• WIESE, A. J.; BARTER, L. S.; ILKIW, J. E.; KITTLESON, M. D.; PYPENDOP, B. H. Cardiovascular and respiratory effects of incremental doses of dopamine and phenylephrine in the management of isoflurane-induced hypotension in cats with hypertrophic cardiomyopathy. American Journal of Veterinary Research, v. 73, n. 6, p. 908-916, 2012. DOI: 10.2460/ajvr.73.6.908.
• WILLIAMSON, E. J.; SOARES, J. H.; HENAO-GUERRERO, N.; COUNCIL-TROCHE, R. M.; PAVLISKO, N. D. Cardiovascular and respiratory effects of two doses of fentanyl in the presence or absence of bradycardia in isoflurane-anesthetized dogs. Veterinary Anaesthesia and Analgesia, v. 45, n. 4, p. 423-431, 2018. DOI: 10.1016/j.vaa.2018.03.001.